PROPAGAÇÃO IN VITRO DE MUSSAENDA (Mussaenda erythrophylla cv. Rosea)

Ano: 2010 | Volume: 40 | Número: 2

Autores: Jacqueline Leite Almeida, JOSEFA DIVA NOGUEIRA DINIZ, Alexandre Bosco de Oliveira, Fernando Felipe Ferreyra Hernandez

Palavras-chave: desinfecção, regulador de crescimento, calos, enraizamento

Resumo Português:

O trabalho foi realizado visando a desenvolver um
protocolo para micropropagação de Mussaenda erytrophylla
cv. Rosea. Na assepsia de segmentos de brácteas, utilizou-se
hipoclorito de cálcio ou hipoclorito de sódio (2,5%), com ou
sem imersão prévia em álcool 70%. Para indução de calos,
os segmentos de brácteas foram inoculados em meio MS com
diferentes concentrações de BAP e ANA. Para indução de
gemas, os calos foram inoculados em meio MS com diferentes
concentrações das citocininas BAP, 2iP e CIN (0,0 mg L-1;
0,5 mg L-1; 1,0 mg L-1; e 2,0 mg L-1). Na multiplicação,
segmentos nodais de plantas in vitro foram inoculados em meio
MS com BAP, CIN e 2iP, nas concentrações de 0,0 mg L-1;
0,5 mg L-1; 1,0 mg L-1; e 2,0 mg L-1. Para o enraizamento,
segmentos nodais de plantas in vitro foram inoculados no
meio MS e MS/2 da formulação dos sais macronutrientes e
diferentes concentrações de AIB (0,00 mg L-1; 0,25 mg L-1;
0,50 mg L-1; e 1,00 mg L-1). O melhor tratamento para a
desinfestação foi aquele em que utilizou-se hipoclorito de
cálcio associado à imersão em álcool. Para a indução de
calos, o meio MS com 0,4 mg L-1 de ANA + 4,0 mg L-1 de
BAP mostrou-se o mais efetivo. A multiplicação das gemas
foi favorecida em meio MS com 0,5 mg L-1 de 2iP ou com
1,0 mg L-1 de CIN. A maior percentagem de explantes com
raízes sem a formação de calos foi observada nos meios com
50% e 100% dos sais MS sem AIB.

Resumo Inglês:

This research aimed to develop a protocol for the
micropropagation of Mussaenda erytrophylla cv. Rosea.
Calcium hypochlorite or sodium hypochlorite (2.5%) was used
for the sterilization of bracts segments, with or without previous
immersion in alcohol 70%. For callus induction, bracts segments
were inoculated on MS medium with different concentrations
of BAP and NAA. For buds induction, callus were inoculated
on MS medium with different concentrations of cytokinins
BAP, 2iP, and KIN (0.0 mg L-1, 0.5 mg L-1, 1.0 mg L-1, and
2.0 mg L-1). For multiplication, nodal segments from in vitro
plants were inoculated in MS medium with BAP, KIN, and 2iP,
in the concentrations of 0.0 mg L-1, 0.5 mg L-1, 1.0 mg L-1, and
2.0 mg L-1. For rooting, nodal segments from in vitro plants
were inoculated using two MS medium dilutions: full strength
and half strength of MS basal salt mixture (macronutrients salts)
and different concentrations of IBA (0.00 mg L-1, 0.25 mg L-1,
0.50 mg L-1, and 1.00 mg L-1). The best sterilization treatment
was achieved by using calcium hypochlorite combined with
immersion in alcohol. For callus induction, the MS medium with
0.4 mg L-1 of NAA plus 4.0 mg L-1 of BAP was more efficient.
Bud multiplication was improved in MS medium with 0.5 mg L-1
of 2iP or 1.0 mg L-1 of KIN. The highest percentage of explants
with roots without emission of callus was observed in the medium
with 50% and 100% of MS salts without IBA.